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                          當前位置:首頁  >  技術文章  >  免疫PCR實驗方法原理

                          免疫PCR實驗方法原理

                          更新時間:2025-11-24      點擊次數:33

                          實驗方法原理

                          主要由兩個部分組成,第一部分的免疫反應類似于普通的酶聯免疫吸附試驗(ELISA)的測定過程;第二部分即通常的PCR檢測,抗原分子的量最終由PCR產物的多少來反映。第一步中,首先用待測抗原(如牛血清白蛋白(ESA))包被微滴板孔,再加入相應的特異抗體,于是抗體就與固相上的抗原結合形成抗原抗體復合物,蛋白A-鏈親合素(Protein A-Streptavidin)嵌合體(重組融合蛋白)中的蛋白A部分可與固相上抗原抗體復合物中的抗體IgG結合,而鏈親合素部分可與生物素化的pUC19(質粒DNA) (Biotin-pUC19)中的生物素反應,從而將特定的DNA間接吸附于固相。接下來,就是第二步中的PCR過程,第一步中吸附于固相的pUC19質粒DNA在相應的引物存在下,可經PCR在幾小時內而放大數百萬倍,PCR產物的多少與固相上抗原的量成正比。

                           

                          PCR由以下五部分構成:

                          (1)待測抗原;

                          (2)生物素化抗體;

                          (3)親和素(連接分子);

                          (4)生物素化DNA;

                          (5)PCR擴增。

                           

                          PCR試劑盒.png

                          主要程序:

                          (1) 抗原+生物素化抗體→抗原-生物素化抗體復合物;

                          (2) 加親合素→抗原-生物素化抗體-親合素復合物;

                          (3) 加生物素化DNA→抗原-生物素化抗體-親合素-生物素化DNA;

                          (4) PCR擴增生物素化DNA部分。

                          實驗材料抗原樣品

                          試劑、試劑盒包被緩沖液洗滌液稀釋液瓊脂糖凝膠

                          儀器、耗材微滴板電泳儀電泳槽

                          實驗步驟

                          一、制備生物素化DNA

                           將噬粒 BLuescript skt,用生物素標記的M13引物進行PCR擴增制備出含T3和T7引物序列的280 bp DNa段,即為生物素化DNA。

                           

                          二、免疫PCR模式

                           1.  試劑

                           包被緩沖液:20 mmol/L Tris-HCI(pH9.5),含150 mmol/L NaCl和0.02%NaN3;

                           洗滌液:20 mmol/L Tris-HCI(pH7.5),含150 mmol/LNaCl 0.1 mmol/L EDTA和0.1%Tween20;

                           稀釋液:20 mmol/L Tris-HCI(pH7.5),含150 mmol/L NaCl 0.45%脫脂奶及變性鮭魚精DNA (0.1 mg/ml)。

                           

                          2.  操作

                           1) 包被

                           用包被緩沖液稀釋抗原(BSA),加入微滴板中(45 μl孔),4℃過夜(約15 h),用洗滌液洗板3次×5 min。

                           2) 封閉

                           每孔加200 μl含4.5%脫脂奶及變性鮭魚精子DNA(1 mg/ml)、0.1 mmol/L EDTA的20 mmol/L Tris-Hcl(pH7.5)(含150 mmol/L NaCl緩沖液,37℃溫育80 min,洗板數次。

                           3) 抗原抗體反應

                           用釋釋液1:8 000稀釋單克隆抗BSA抗體,每孔加50 μl,室溫(22℃)下45 min,洗板孔15次×10 min,去除未結合的抗體分子。

                           4) 鏈親合一蛋白A結合反應

                           每孔加入50 μl用稀釋液稀釋的已與生物素-pUC19結合的鏈親合素-蛋白A嵌合體,室溫(22℃)50 min,使得嵌合體-pUC19結合于固相的抗原抗體復合物上,然后洗板15次×10 min,再用無NaN3的TBS洗3次,然后即可將微滴板用于后面的PCR反應。

                           5) PCR

                           實驗條件 50 mmol/L KCI、10 mmol/L Tris-HCI(20℃pH8.3)、1.5 mmol/LMgCl2、明膠(10 μg/ml)、0.8 mmol/LdNTPs(每種0.2 mM)、2 μM引物(每一引物1 μM)和TaqDNA多聚酶(50 U/ml)。

                           

                          三、PCR周期

                           PCR前,用紫外線(UV)(254 nm)照射上述反應混合物,然后將之加入到微滴板孔中,每孔40 μl,再加20 μl UV照射的石蠟覆蓋,按下述溫度在PCR儀上進行PCR周期:起始變性94℃5 min;30個周期:變性94℃5 min,退火58℃1 min,延伸72℃1 min,最后延伸72℃ 5 min,得到的PCR產物為特定的261 bp的片段。

                           1.  用0.85% NaCl將細菌溶液稀釋至一定濃度;

                           2.  加50 μl于微孔板內,4℃過夜。同時設陰性對照(加50 μl 0.85% NaCl于另一孔內);

                           3.  用400 μl的0.05% 溫20pBS(以下簡稱TPBS),洗滌五次;

                           4.  加入2.25%的100 μl正常山羊血清(NGS) PBS封閉2小時; 

                          ⒌  用含0.15% NGS的TPBS洗3次;

                          6.  加入100 μl用0.75% NGS適當稀釋的單克隆抗體(內含100 μg的鮮魚精DNA),室溫孵育30 min;

                          7.  用TPBS洗滌五次;

                          8.  加入50 μl適量稀釋的生物素化抗鼠IgG抗體,室溫孵育30 min;

                          9.  用TPBS洗滌五次;

                          10.  加入60 μl適量稀釋的生物素化DNA和親和素,室溫孵育30 min;

                          11.  用TPBS洗滌五次,再用HPLC級水洗三次;

                          12.  PCR擴增:加入50μl PCR反應液(內含T3和T7引物),95℃ 60 s,50℃ 110 s,72℃ 110 s,循環30次。取PCR產物10 μl于1.7%瓊脂糖凝膠上電泳,和核酸分子量標準相比較,在相應的位置郵現電泳帶為陽性。必需時將電泳結果照像,進行定量分析。


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